Tecnología confocal de doble disco giratorio
Como pionero en la tecnología confocal de doble disco giratorio, Yokogawa ha revolucionado la obtención de imágenes de células vivas en microscopía óptica. El método de barrido multihaz no solo ofrece imágenes a alta velocidad, sino que también reduce significativamente la fototoxicidad y el fotoblanqueamiento, lo que convierte a nuestros escáneres confocales en la herramienta estándar de facto para la obtención de imágenes de células vivas.
Imágenes de alta velocidad y resolución
Los escáneres confocales de Yokogawa emplean tecnologías de imagen avanzadas para ayudar a los investigadores a obtener imágenes de alta velocidad y alta resolución de células vivas.
- Imágenes confocales rápidas en lapsos de tiempo de células vivas
- Fototoxicidad mínima y menor fotoblanqueo
- Capacidad de obtención de imágenes de fluorescencia confocal de células vivas
- Estabilidad durante la obtención de imágenes a largo plazo y a alta velocidad
- Facilita el análisis cuantitativo de enormes cantidades de datos
-
Superresolución
Superresolución mediante reasignación óptica.
-
Amplio campo de visión
La CSU-W1 es nuestra respuesta a las peticiones de los investigadores de "FOV más amplio" e "imágenes más nítidas".
-
Alta velocidad
La CSU-X1 está ampliamente reconocida como la herramienta líder para la obtención de imágenes de células vivas con una capacidad de 2.000 fps.
-
Uniformizador
Una opción de conformador de haz plano para CSU-W1.
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Comparación de las series CSU
| Modelo | CSU-W1 | CSU-X1 | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| Gama alta | Básico | |||||
| Velocidad de imagen (Máx. fps) |
200 | 2,000 | 360 | |||
| Motor del escáner Velocidad de rotación (rpm) |
1,500-4,000 | 1,500-10,000 (Variable) |
1,800 (Fijo)*2 |
|||
| Recomendado cámara tiempo de exposición |
5mseg | 0,5 ms | 33mseg | |||
| FOV efectivo | 17x16mm | 10x7mm | ||||
| Unidad de disco | Seleccionable hasta 2 discos Tamaño del agujero: 50µm, 25µm |
1 disco Tamaño del agujero :50µm |
||||
| Rotación disparador de posición señal |
Posibilidad de salida de señal externa | Ninguno*2 | ||||
| Filtros | EX | Opción | ||||
| DM | Opción (hasta 3 filtros) | Opción (1 filtro) |
||||
| EM | Opción (hasta 10 filtros con rueda de filtros) |
Opción (hasta 12 filtros con rueda de filtros) |
Opción (1 filtro) |
|||
| Adición o cambio de filtros |
En las instalaciones del usuario: bloque DM y filtros (EX, EM.) En la fábrica Yokogawa:DM |
|||||
| *1 opción | ||||||
Comparación entre el CSU y otros sistemas confocales
| Modelo | CSU | Convencional Confocal de barrido puntual |
Convencional Confocal de hendidura |
Otros discos disco Confocal |
Epi- fluorescencia (campo amplio) |
|---|---|---|---|---|---|
| Tipo de exploración | Microlente mejorada exploración multihaz |
Exploración monohaz | Exploración de líneas | Exploración de disco (multihaz o de rendija) | Ninguno |
| Fuente de luz | Láseres | Lámpara de arco de Hg o xenón | |||
| Detector | CCD, EMCCD | PMT | Línea CCD | CCD, EMCCD | |
| Microscopio | Flexible | Específico | Flexible / Específico | Flexible | |
| Velocidad de escaneado de imagen a tamaño completo |
2000 fps | ~1fps | ~120fps (512X512) | <200fps | Cualquier |
| Fotoblanqueo/ foto toxicidad |
Bajo | Grave | Bajo | ||
| Confocalidad | Alta (confocal X-Y-Z) | Modesto (Compromiso y-resolución) |
Modesto (X-Y-Z confocal con agujero de alfiler, Resolución y comprometida con slit-scan) |
Ninguno | |
| Calidad de imagen (Fondo) |
Alta Buena S/N (Bajo fondo) |
Alta (es necesario necesario) |
Modesto | Modesto (Fondo alto con muestras tenues) |
Bajo (Fondo alto) |
Laboratorios de usuarios
- Laboratorio Ted Salmon, Departamento de Biología, Universidad de Carolina del Norte, Chapel Hill
- Laboratorio Waterman-Storer, Laboratorio de Morfodinámica Celular y Tisular (LCTM),NHLBI（Bethesda Campus).
- Laboratorio Tim Mitchison, Departamento de Biología de Sistemas, Facultad de Medicina de Harvard
- Laboratorio Scholey, Dpto. de Biología Celular y Computacional, Universidad de California, Davis
- Laboratorio Vale, Departamento de Farmacología Celular y Molecular, Universidad de California, San Francisco
- Laboratorio Wadsworth, Departamento de Biología, Universidad de Massachusetts, Amherst
- Laboratorio Kiehart, Departamento de Biología, Universidad de Duke
- HSC Core Facilities Facultad de Medicina, Universidad de Utah
- Centro de Microscopía Biológica de Indiana, Centro Médico de la Universidad de Indiana
- Laboratorio Ehlers - Departamento de Neurobiología, Universidad de Duke
- Laboratorio Bob Goldstein, Universidad de Carolina del Norte Chapel Hill
- Laboratorio Andrew Matus, en el Instituto Friedrich Miescher de Investigación Biomédica
- Laboratorio de Dinámica del Desarrollo, Escuela Superior de Ciencias de la Vida, Universidad de Tohoku
- Laboratorio Zena Werb, Anatomía, Universidad de California San Francisco
- Laboratorio Satoshi Nishimura, Departamento de Medicina Cardiovascular, Universidad de Tokio
- Laboratorio Oshima, Escuela Superior de Estudios Interdisciplinarios de la Información, Universidad de Tokio.
- El grupo de investigación Huser de UC Davis
- Laboratorio Nakano, Escuela Superior de Ciencias, Universidad de Tokio
Sitios útiles
1) Microscopía e imagen Recursos en la WWW
Lista completa de todos los aspectos de microscopía e imagen, por Douglas W. Cromey Del Cellular Imaging Core of Southwest Environmental Health Sciences Center, University of Arizona Facultad de Farmacia, Universidad de Arizona.
2) El Centro de Biología Molecular "Severo Ochoa" (CBMSO)
Contiene enlaces a información general, laboratorios de microscopía, publicaciones, cursos y reuniones, sociedades, imágenes. Especialmente útil para encontrar talleres de microscopía.
3) La Instalación de Imágenes Celulares, que forma parte del Departamento de Instalaciones Básicas de Investigación del Centro de Ciencias de la Salud de la Universidad de Utah.
Buena explicación del sistema confocal de barrido CSU-Disk por Chris Rodesch
4) Página web de Molecular Expressions
Gestionado por el Laboratorio Nacional de Altos Campos Magnéticos de la Universidad Estatal de Florida.
Una de las mayores colecciones de Internet de excelentes imágenes de microscopía óptica, e información bastante completa sobre todos los tipos de microscopía.
Java interactivo Tutoriales patrocinado por Nikon (Nikon MicroscopyU) y Olympus (Olympus Microscopy Resource Center) es extremadamente útil para aprender no sólo confocal sino todo tipo de microscopías y tecnologías relacionadas.
Ciencia de la vida Libros de texto
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Técnicas de Microscopía, Avances en Ingeniería Bioquímica/Biotecnología Vol.95 |
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Microscopía confocal para biólogos |
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Live Cell Imaging, A Laboratory Manual |
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Manual de microscopía confocal biológica, 3ª edición |
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VideoMicroscopía, Los Fundamentos ISBN: 0-306-45531-5
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Escáner confocal de alta velocidad y visión directa: El CSU-10, Capítulo 2: Aplicaciones biológicas celulares de la microscopía confocal (Methods in Cell Biology) |
Artículos: Tecnología CSU y sus aplicaciones
| Cuantificación y agrupación de estructuras citoesqueléticas de actina en células vegetales: papel del agrupamiento de actina en el movimiento estomático durante los ciclos diurnos en las células de guarda de Arabidopsis. Higaki T, Kutsuna N, Sano T, Kondo N, Hasezawa S presentado. |
| Aplicación actual y tecnología de las imágenes de calcio de las multineuronas funcionales. Shigehiro Namiki y Yuji Ikegaya Boletín Biológico y Farmacéutico Vol.32(2009) , No.11 |
| Imágenes en directo de la maduración cisternal del Golgi de la levadura. Kumi Matsuura-Tokita, Masaki Takeuchi, Akira Ichihara, Kenta Mikuriya y Akihiko Nakano Nature 441, 1007-1010 (22 de junio de 2006) |
| Comparación del rendimiento entre el sistema confocal de disco giratorio de alta velocidad Yokogawa y los sistemas confocales de barrido de un solo punto. E. Wang, C. M. Babbey & K. W. Dunn Journal of Microscopy, Vol. 218, Pt 2 Mayo 2005, pp. 148 ?159 |
| Imágenes de vida de fluorescencia seccionadas ópticamente utilizando un microscopio de disco Nipkow y una fuente de excitación continua ultrarrápida sintonizable. D.M.Grant, D.S. Elson, D.Schimpf, C.Dunsby, J.Requejo-Isidro, E.Auksorius, I.Munro, M.A. A. Neil, P. M. W. French ,E. Nye G. Stamp, P.Courtney Optics Letters Vol. 30, No. 24 (2005 ) 3353 |
| Optimización de la Microscopía Confocal de Disco Giratorio: Sincronización con el EMCCD ultrasensible. F.K.Chong, C.G.Coates, D.J.Denvir, N.McHale, K.Thornbury & M.Hollywood Actas del SPIE 2004 |
| Spinning disk confocal microscope system for rapid high-resolution, multimode, fluorescence speckle microscopy and green fluorescent protein imaging in living cells. Maddox PS, Moree B, Canman JC, Salmon ED Methods Enzymol. 360:597-617 (2003) |
| Un sistema de microscopio confocal multiespectral de disco giratorio de alta velocidad para microscopía de moteado fluorescente de células vivas. Adams, M.C., Salmon, W.C., Gupton, S.L., Cohan, C.S., Wittmann, T., Prigozhina, N. & Waterman-Storer, C.M Métodos, 29, 29?41 (2003) |
| Microscopía confocal de disco giratorio: una herramienta de vanguardia para la obtención de imágenes del tráfico de membranas. Nakano, A. Cell Structure Function, 27, 349?355.(2002) |
| Microscopio confocal de barrido de alta velocidad de 1 fotograma/ms con microlente y discos de Nipkow. T.Tanaami, S.Otsuki,N.Tomosada, Y.Kosugi. M.Shimizu & H.Ishida Applied Optics, Vol.41,No.22(2002) |
| Nuevos modos de obtención de imágenes para microscopios de barrido en tándem con baterías de lentes. T. F. Watson, R. Juskaitis & T. Wilson Journal of Microscopy, Vol. 205, Pt 2 Febrero (2002) 209?212 |
| Microscopía confocal de fluorescencia de alta velocidad utilizando un escáner Nipkow con microlentes para la obtención de imágenes tridimensionales de una única molécula de fluorescencia en tiempo real. A.Ichihara, T.Tanaami, K.Isozaki, Y.Sugiyama, Y.Kosugi, K.Mikuriya, M.Abe e I.Uemura Bioimágenes 4, 57-62(1996) |
Artículos: Biología celular
(Transporte vesicular, dinámica de la actina, dinámica de los microtúbulos, división celular)
| Obtención de imágenes de células vivas en seis dimensiones a largo plazo para el embrión de preimplantación de ratón que no afecta al desarrollo a término. Yamagata, K., Suetsugu, R. y Wakayama, T., J. Reprod. Dev., 55: 328-331(2009) " |
| El DDX-23 de Caenorhabditis elegans, un homólogo del factor de empalme PRP28 de la levadura, es necesario para el cambio espermatozoide-oocito y la diferenciación de varios tipos celulares. Konishi, T., Uodome, N., y Sugimoto, A.,Developmental Dynamics 237, 2367-2377(2008) |
| Determinación de la posición del plano de división celular. J. C. Canman, L. A. Cameron, P.S. Maddox, A. Straight, J, S. Tirnauer, T. J. Mitchison, G. Fang., T. M. Kapoor & E. D. Salmon, Nature 424, 1074-1078 (28 de agosto de 2003) "Portada" |
| Los Microtúbulos Estabilizados con Taxol Pueden Posicionar el Surco Citocinético en Células de Mamífero. Katie B. Shannon, Julie C. Canman,C. Ben Moree,Jennifer S. Tirnauer, y E. D. Salmon, Mol Biol Cell. Septiembre; 16(9): 4423?4436 (2005) |
| Dos quinesinas mitóticas cooperan para impulsar la separación de las cromátidas hermanas durante la anafase. G. C. Rogers, S. L. Rogers, T. A. Schwimmer,S. C. Ems-McClung, .C E. Walczak, R. D. Vale, J. M. Scholey & D. J. Sharp, Nature 427(6972):, 364-370 (2004) |
| Crm1 es un efector mitótico de Ran-GTP en células somáticas Arnaoutov, A., Azuma, Y., Ribbeck, K., Joseph, J., Boyarchuk, Y. y Dasso, M, Nat Cell Biol. Jun;7(6):626-32 (2005). |
| Nuclear congression is driven by cytoplasmic microtubule plus end interactions in S. cerevisiae. J.N. Molk, E.D. Salmon, y K. Bloom, JCB, Vol. 172, Número 1, 27-39 (2006) |
| Los fragmentos del centrosoma y los microtúbulos son transportados asimétricamente lejos del plano de división en anafase Nasser M. Rusan y Patricia Wadsworth ,JCB 168 (1) 21?28 (2005) |
| Las funciones de las proteínas motoras basadas en microtúbulos en la mitosis: análisis exhaustivo de ARNi en la línea celular S2 de Drosophila. G. Goshima y R.D. Vale,JCB 162(6) 1003?1016 (2003) |
| La orientación del huso en Saccharomyces cerevisiae depende del transporte de los extremos de los microtúbulos a lo largo de cables de actina polarizados. Hwang, E., Kusch, J., Barral, Y. & Huffaker, T.C, J. Cell Biol. 161, 483?488 (2003) |
| Migración celular sin lamelipodio : traducción de la dinámica de la actina en movimiento celular mediado por tropomiosina S.L. Gupton, K.L. Anderson, T. P. Kole, R.S. Fischer, A. Ponti, S.E. Hitchcock-DeGregori, G. Danuser, V.M. Fowler, D.Wirtz, D. Hanein y C.M. Waterman-Storer ,JCB 168(4) 619-631(2005) |
| Dinámica de la actina en el anillo contráctil durante la citocinesis en la levadura de fisión. Pelham, R.J. & Chang, F, Nature, 419, 82?86. (2002) |
| Las células T efectoras CD8+ contribuyen al reclutamiento de macrófagos y a la inflamación del tejido adiposo en la obesidad. Nishimura S, Manabe I, Nagasaki M, Eto K, Yamashita H, Ohsugi M, Otsu M, Hara K, Sugiura S,Yoshimura K, Kadowaki T, Nagai R, Nature Medicine 8, 914- 920 (15 de agosto de 2009). |
| La captación de células dendríticas por células T reorganiza rápidamente el transporte de MHC de clase II. M. Boes, J. Cerny, R. Masso, M. Op den Brouw, T. Kirchhausen, J. Chenk & H. L. Ploegh, Nature 418, 983- 988 (29 de agosto de 2002) "Portada" |
| Coordinación funcional de los motores de transporte intraflagelar. G. Ou, O.E. Blacque, J.J.Snow, M.R. Leroux & J.M. Scholey,Nature 436(7050):583-7. (2005). |
| Análisis tridimensional de la exocitosis del transportador post-Golgi en células epiteliales Kreitzer, G., Schmoranzer, J., Low, S.H., Li, X., Gan, Y., Weimbs, T., Simon, S.M. & Rodriguez-Boulan, E, Nature Cell Biol. 5, 126?136. (2003) |
| Dinámica de las Estructuras Recubiertas de Clatrina de Membrana Durante la Citocinesis. James H. & Wang, Yu-Li Warner, Anne K., Keen, Traffic 7 (2), 205-215. (2006 ) |
Artículos: Neurociencia
| Orientación de la profilina inducida por la actividad y estabilización de la morfología de la espina dendrítica. Ackermann, M., y A. Matus, Nat Neurosci. Nov;6(11):1194-200 (2003) |
| Dinámica y Regulación de Capas de Clatrina en Zonas Endocíticas Especializadas de Dendritas y Espinas. T.A. Blanpied, D.B. Scott, M.D. Ehlers, Neuron, Vol. 36, 435?449, 24 de octubre(2002) |
| El Complejo Neurabin/Proteína Fosfatasa-1 Regula la Morfogénesis y Maduración de la Espina Dendrítica. R.T.Terry-Lorenzo, D.W. Roadcap, T. Otsuka , T.A. Blanpied, P.L. Zamorano, C.C. Garner, S. Shenolikar, and M.D. Ehlers, MBC Vol. 16, Issue 5, 2349-2362, May (2005) |
| La fosfatidilinositol fosfato cinasa tipo I regula la dinámica de la fusión de vesículas de núcleo denso de gran tamaño. L.W..Gong , G. D.Paolo, E. Diaz , G.Cestra , M-E. Diaz, M. Lindau , P.De Camilli , y D. Toomre , PNAS, vol. 102 nº 14 5204-5209 (2005) |
Dinámica del calcio
| Formación de ondas de Ca2+ planas y en espiral en miocitos cardíacos aislados. Ishida, H., Genka, C., Hirota, Y., Nakazawa, H. & Barry, W.H, Biophys. J. 77, 2114?2122 (1999) |
| Imágenes simultáneas del metabolismo del fosfatidil inositol y los niveles de Ca2+ en células PC12h. Morita,M,Yoshiki, F,and ,Kudo,Y, BBRC 308, 673-678 (2003) |
| Oscilaciones de calcio en las células intersticiales de la uretra del conejo. Johnston, L., Sergeant, G. P., Hollywood, M. A., Thornbury, K. D. & McHale, N. G,The Journal of Physiology 565 (2), 449-461 (2005). |
Flujo sanguíneo microvascular
| Observación en tiempo real de los cambios hemodinámicos en aneurismas glomerulares inducidos por anticuerpos anti-Thy-1. Oyanagi-Tanaka, Y., Yao, J., Wada, Y., Morioka, T., Suzuki, Y., Gejyo, F., Arakawa, M. & Oite, T, Kidney Int. 59, 252?259. (2001) |
| Imágenes in vivo en tiempo real de plaquetas, factor tisular y fibrina durante la formación de trombos arteriales en el ratón. Shahrokh Falati, Prter Gross, Glenn Merrill-Skoloff, Barbara C. Furie & Bruce Furie, Nat Med 8 (10) 1175-1180(2002) |
Otras aplicaciones
| Evidencia de la generación de ROS por las mitocondrias en células con deterioro de la cadena de transporte de electrones y daño del ADN mitocondrial Hiroko P. Indo,Mercy Davidson,Hsiu-Chuan Yen,Shigeaki Suenaga,Kazuo Tomita,Takeshi Nishii,Masahiro Higuchi,Yasutoshi Koga,Toshihiko Ozawa,Hideyuki J. Majima,Mitochondrion No.7 106?118(2007) |
Recursos
Descubrir los principios básicos de la vida mediante la imagen en vivo de C. elegans
Visualización de las bases del comportamiento celular de la morfogénesis epitelial y la progresión del cáncer epitelial
Spinning Disk Confocal Microscopy for Quantitative Imaging and Multi-Point Fluorescence Fluctuation Spectroscopy.
Ancho y Claro
Unidad de escáner confocal
La observación a largo plazo de la mitosis mediante microscopía de células vivas es necesaria para descubrir el papel de la cohesina en la arquitectura nuclear compartimentada, que está vinculada a las funciones nucleares.
Para llevar a cabo la observación a largo plazo de la mitosis se necesitan dispositivos que tengan bajos efectos fototóxicos sobre las células vivas y permitan la obtención de imágenes a alta velocidad. Utilizando la unidad de escáner confocal CSU W-1 para la obtención de imágenes a intervalos de tiempo se puede examinar la entrada en mitosis, la progresión mitótica y la salida.
Comparación entre CSU y LSM convencional en películas 4D.
Para investigar la dinámica interactiva de las estructuras y orgánulos intracelulares en el movimiento estomático mediante la técnica de imagen en vivo, se utilizó un sistema CSU para capturar imágenes tridimensionales (XYZN) e imágenes time-laps (XYT) de células guardianas.
Unidad de escáner confocal más rápida, brillante y versátil
Lista de publicaciones seleccionadas : CSU-X1
Lista de publicaciones seleccionadas : CSU-W1
Descargas
Vídeos
YOKOGAWA permite la obtención rápida de imágenes confocales en tiempo real para aplicaciones como la obtención de imágenes 3D de alta velocidad y de células vivas a largo plazo. Estos análisis cuantificables de imágenes son herramientas esenciales para el descubrimiento moderno de fármacos de precisión.
YOKOGAWA contribuirá a la evolución tecnológica, sobre todo en herramientas de medición y análisis, para ayudar a construir un mundo en el que los investigadores se centren cada vez más en la interpretación perspicaz de los datos y en el avance de Ciencia de la vida en beneficio de la humanidad.
Noticias
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Nota de Prensa nov 30, 2021 Yokogawa Desarrollan el sistema unicelular SS2000 para muestreo subcelular
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