Konfokale Dual-Spinning-Disk-Technologie
Als Vorreiter auf dem Gebiet der konfokalen Dual-Spinning-Disk-Technologie hat Yokogawa das Live-Cell-Imaging in der optischen Mikroskopie revolutioniert. Das Multistrahl-Scanningverfahren bietet nicht nur Hochgeschwindigkeits-Imaging sondern auch eine signifikante Reduktion der Phototoxizität und Photobleiche, welche unsere konfokalen Scanning-Systeme zum De-facto-Standard-Werkzeug für das Live-Cell-Imaging macht.
Hochgeschwindigkeits-, hochauflösendes Imaging
In Yokogawas Konfokalscannern kommen fortschrittlichste Imaging-Technologien zur Anwendung, um Forscher im Bereich des Hochgeschwindigkeits- und hochauflösenden Live-Cell-Imagings zu unterstützen.
- Schnelle Zeitraffer-Konfokalbilder von lebenden Zellen
- Minimale Phototoxizität und weniger Photobleiche
- Möglichkeiten des konfokalen Lebendzell-Fluoreszenz-Imagings
- Stabilität während des Langzeit- und Hochgeschwindigkeits-Imagings
- Ermöglicht die quantitative Analyse von großen Datenmengen
-
Superauflösung
Superauflösung durch optisches Re-Assignment
-
Weites Sichtfeld
Das CSU-W1 ist unsere Antwort auf Anfragen von Forschern nach einem „weiteren Sichtfeld (FOV)“ und nach „klareren Bildern“.
-
Hohe Geschwindigkeit
Das CSU-X1 ist das allgemein anerkannte führende Tool im Bereich des Live-Cell-Imagings mit einer Bildrate von 2.000 fps.
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Yokogawa Life Science
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Vergleich von CSU-Serien
| Ausführung | CSU-W1 | CSU-X1 | ||||
|---|---|---|---|---|---|---|
| High-End | Basis | |||||
| Imaging-Geschwindigkeit (Max. fps) |
200 | 2.000 | 360 | |||
| Scanner-Motor Rotationsgeschwindigkeit (min−1) |
1.500 - 4.000 | 1.500 - 10.000 (Variable) |
1.800 (Festwert)*2 |
|||
| Empfohlene Kamera Belichtungszeit |
5 ms | 0,5 ms | 33 ms | |||
| Effektives FOV | 17 x 16 mm | 10 x 7 mm | ||||
| Disk-Unit | Auswählbar bis zu 2 Disks Spirallochgröße: 50 µm, 25 µm |
1 Scheibe Spirallochgröße: 50 µm |
||||
| Rotation Positionsauslöser Signal |
Externe Signalausgabe möglich | Keine*2 | ||||
| Filter | EX | Option | ||||
| DM | Option (bis zu 3 Filter) | Option (1 Filter) |
||||
| EM | Option (bis zu 10 Filter mit Filterrad) |
Option (bis zu 12 Filter mit Filterrad) |
Option (1 Filter) |
|||
| Hinzufügen oder Austausch von Filtern |
Beim Kunden: DM-Block und Filter (EX, EM.) Bei Yokogawa: DM |
|||||
| *1 Option | ||||||
Vergleich zwischen CSU und anderen Konfokalsystemen
| Ausführung | CSU | Konventionell Punkt-Scan, Konfokal |
Konventionell Schlitz-Scan, Konfokal |
Andere Rotations- scheibe, Konfokal |
Epifluoreszenz (Breites Feld) |
|---|---|---|---|---|---|
| Scan-Typ | Mikrolinsen-erweitert Multistrahl-Scan |
Einzelstrahl-Scan | Zeilen-Scan | Disk-Scan (Multistrahl oder Schlitz) | Keine |
| Lichtquelle | Laser | Hg oder Xenon Bogenlampe | |||
| Detektor | CCD, EMCCD | PMT | Zeilen-CCD | CCD, EMCCD | |
| Mikroskop | Flexibel | Spezifisch | Flexibel/Spezifisch | Flexibel | |
| Scangeschwindigkeit des Bildes in Originalgröße |
2000 fps | ~ 1 fps | ~ 120 fps (512 x 512) | < 200 fps | Jede |
| Photobleichen / Phototoxizität |
Niedrig | Gravierend | Niedrig | ||
| Konfokalität | Hoch (X-Y-Z konfokal) | Mäßig (kompromittierte Y-Auflösung) |
Mäßig (X-Y-Z konfokal mit Spiralloch, Kompromittierte Y-Auflösung mit Schlitz-Scan) |
Keine | |
| Bildqualität (Hintergrund) |
Hohes S/N (Niedriges Hintergrundrauschen) |
Hoch (Mehrfachmittelung notwendig) |
Mäßig | Mäßig (Hohes Hintergrundrauschen mit dunklen Proben) |
Niedrig (Hohes Hintergrundrauschen) |
Kunden
- Ted Salmon Lab., Dept. of Biology [Abt. f. Biologie], University of North Carolina, Chapel Hill
- Waterman-Storer Lab., Laboratory of Cell and Tissue Morphodynamics (LCTM) [Abt. f. Zell- und Gewebemorphodynamik], NHLBI (Bethesda Campus)
- Tim Mitchison Lab., Dept. of Systems Biology [Abt. f. Systembiologie], Harvard Medical School
- Scholey Lab., Dept. of Cell and Computational Biology [Abt. f. Zell- und Computerbiologie], University of California, Davis
- The Vale Lab., Dept. of Cellular and Molecular Pharmacology [Abt. f. Zell- und Molekularpharmakologie], University of California, San Francisco
- The Wadsworth Lab., Biology Dept. [Abt. f. Biologie], University of Massachusetts, Amherst
- The Kiehart Lab., Dept. of Biology [Abt. f. Biologie], Duke University
- HSC Core Facilities School of Medicine, University of Utah
- Indiana Center for Biological Microscopy [Zentrum f. Biologische Mikroskopie], Indiana University Medical Center
- Ehlers Laboratory - Department of Neurobiology [Abt. f. Neurobiologie], Duke University
- Bob Goldstein Lab., University of North Carolina, Chapel Hill
- Andrew Matus Lab., am Friedrich Miescher Institute for Biomedical Research
- Laboratory of Developmental Dynamics, Graduate School of Life Sciences, Tohoku University
- Zena Werb Lab., Anatomy [Anatomie], University of California San Francisco
- Satoshi Nishimura Lab., Dept. of Cardiovascular Medicine [Abt. f. kardiovaskuläre Medizin], University of Tokyo
- Oshima Lab., Graduate School of Interdisciplinary Information Studies, Univ. of Tokyo
- The Huser research group am UC Davis
- Nakano Lab., Graduate School of Science, University of Tokyo
Nützliche Seiten
1) Mikroskopie & Imaging-Ressourcen im WWW
Vollständige Liste aller Aspekte von Mikroskopie und Imaging, von Douglas W. Cromey von Cellular Imaging Core des Southwest Environmental Health Sciences Center, University of Arizona College of Pharmacy, University of Arizona
2) Das Centro de Biologia Molecular (Zentrum für Molekularbiologie) „Severo Ochoa“ (CBMSO)
Enthält Links zu allgemeinen Informationen, Mikroskopielaboren, Veröffentlichungen, Kursen und Veranstaltungen, Vereinigungen, Bildern. Insbesondere hilfreich für das Finden von Mikroskopie-Workshops
3) The Cell Imaging Facility, ein Teil des University of Utah Health Science Center's Core Research Facilities Department [Die Zell-Imaging-Einrichtung, ein Teil der Abteilung für Kernforschungseinrichtungen des Zentrums für Gesundheitswissenschaften der Universität Utah]
Gute Erklärung zum konfokalen CSU-Disk-Scanning-Systems von Chris Rodesch
4) Molecular Expressions Webseite
Geführt durch National High Magnetic Field Laboratory, Florida State University.
Eine der größten Web-Kollektionen exzellenter optischer Mikroskopiebilder, und sehr genaue Informationen zu allen Mikroskopiearten.
Von Nikon (Nikon MicroscopyU) und Olympus (Olympus Microscopy Resource Center) gesponserte interaktive Java-Tutorien sind nicht nur für das Erlernen von Konfokalmikroskopien sondern aller Mikroskopiearten und verwandten Technologien sehr hilfreich.
Life Science Fachbücher
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Microscopy Techniques, Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology Vol. 95 |
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|
Confocal Microscopy for Biologists |
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|
Live Cell Imaging, A Laboratory Manual |
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|
Handbook of Biological Confocal Microscopy, 3rd Edition |
|
|
VideoMicroscopy, The Fundamentals ISBN: 0-306-45531-5
|
|
|
Direct-View High-Speed Confocal Scanner: The CSU-10, Chapter 2: Cell Biological Applications of Confocal Microscopy (Methods in Cell Biology) |
Artikel: CSU Technology and its applications
| Quantification and clustering of actin cytoskeletal structures in plant cells: role of actin bundling in stomatal movement during diurnal cycles in Arabidopsis guard cells. Higaki T., Kutsuna N., Sano T., Kondo N., Hasezawa S. eingereicht. |
| Current Application and Technology of Functional Multineuron Calcium Imaging. Shigehiro Namiki and Yuji Ikegaya Biological and Pharmaceutical Bulletin Vol. 32 (2009), No. 11 |
| Live imaging of yeast Golgi cisternal maturation. Kumi Matsuura-Tokita, Masaki Takeuchi, Akira Ichihara, Kenta Mikuriya and Akihiko Nakano Nature 441, 1007-1010 (22. Juni 2006) |
| Performance comparison between the high-speed Yokogawa spinning disc confocal system and single-point scanning confocal systems. E. Wang, C. M. Babbey & K. W. Dunn Journal of Microscopy, Vol. 218, Pt 2. Mai 2005, S. 148-159 |
| Optically sectioned fluorescence lifetime imaging using a Nipkow disk microscope and a tunable ultrafast continuum excitation source. D. M. Grant, D.S. Elson, D. Schimpf, C. Dunsby, J. Requejo-Isidro, E. Auksorius, I. Munro, M. A. A. Neil, P. M. W. French , E. Nye G. Stamp, P. Courtney Optics Letters Vol. 30, No. 24 (2005) 3353 |
| Optimization of Spinning Disk Confocal Microscopy: Synchronization with the Ultra-Sensitive EMCCD. F. K. Chong, C. G. Coates, D. J. Denvir, N. McHale, K. Thornbury & M. Hollywood Proceedings of SPIE 2004 |
| Spinning disk confocal microscope system for rapid high-resolution, multimode, fluorescence speckle microscopy and green fluorescent protein imaging in living cells. Maddox PS, Moree B, Canman JC, Salmon ED Methods Enzymol. 360:597-617 (2003) |
| A high-speed multispectral spinning-disk confocal microscope system for fluorescent speckle microscopy of living cells. Adams, M.C., Salmon, W.C., Gupton, S.L., Cohan, C.S., Wittmann, T., Prigozhina, N. & Waterman-Storer, C.M Methods, 29, 29-41 (2003) |
| Spinning-disk confocal microscopy ? a cutting-edge tool for imaging of membrane traffic. Nakano, A. Cell Structure Function, 27, 349-355 (2002) |
| High Speed 1-frame/ms scanning confocal microscope with a microlens and Nipkow disks. T. Tanaami, S. Otsuki, N. Tomosada, Y. Kosugi. M. Shimizu & H. Ishida Applied Optics, Vol. 41, No. 22 (2002) |
| New imaging modes for lenslet-array tandem scanning microscopes. T. F. Watson, R. Juskaitis & T. Wilson Journal of Microscopy, Vol. 205, Pt 2. Februar (2002) 209-212 |
| High-speed confocal fluorescence microscopy using a Nipkow scanner with microlenses for 3-D imaging of single fluorescence molecule in real time. A. Ichihara, T. Tanaami, K. Isozaki, Y. Sugiyama, Y. Kosugi, K. Mikuriya, M. Abe and I. Uemura Bioimages 4, 57-62 (1996) |
Artikel: Cell Biology
(Vesicular transport, actin dynamics, microtubule dynamics, cell division)
| Long-term, Six-dimensional Live-cell Imaging for the Mouse Preimplantation Embryo That Does Not Affect Full-term Development. Yamagata, K., Suetsugu, R. and Wakayama, T., J. Reprod. Dev., 55: 328 - 331 (2009)“ |
| The Caenorhabditis elegans DDX-23, a homolog of yeast splicing factor PRP28, is required for the sperm-oocyte switch and differentiation of various cell types. Konishi, T., Uodome, N., and Sugimoto, A., Developmental Dynamics 237, 2367-2377 (2008) |
| Determining the position of the cell division plane. J. C. Canman, L. A. Cameron, P.S. Maddox, A. Straight, J. S. Tirnauer, T. J. Mitchison, G. Fang, T. M. Kapoor & E. D. Salmon, Nature 424, 1074 - 1078 (28. August 2003) „Cover“ |
| Taxol-stabilized Microtubules Can Position the Cytokinetic Furrow in Mammalian Cells. Katie B. Shannon, Julie C. Canman, C. Ben Moree, Jennifer S. Tirnauer, and E. D. Salmon, Mol Biol Cell. September; 16 (9): 4423-4436 (2005) |
| Two mitotic kinesins cooperate to drive sister chromatid separation during anaphase. G. C. Rogers, S. L. Rogers, T. A. Schwimmer, S. C. Ems-McClung, .C E. Walczak, R. D. Vale, J. M. Scholey & D. J. Sharp, Nature 427 (6972): 364-370 (2004) |
| Crm1 is a Mitotic Effector of Ran-GTP in Somatic Cells Arnaoutov, A., Azuma, Y., Ribbeck, K., Joseph, J., Boyarchuk, Y. and Dasso, M., Nat Cell Biol. Jun; 7 (6): 626-32 (2005). |
| Nuclear congression is driven by cytoplasmic microtubule plus end interactions in S. cerevisiae. J.N. Molk, E.D. Salmon, and K. Bloom, JCB, Vol. 172, Number 1, 27-39 (2006) |
| Centrosome fragments and microtubules are transported asymmetrically away from division plane in anaphase Nasser M. Rusan und Patricia Wadsworth, JCB 168 (1) 21-28 (2005) |
| The roles of microtubule-based motor proteins in mitosis: comprehensive RNAi analysis in the Drosophila S2 cell line. G. Goshima und R.D. Vale, JCB 162 (6) 1003-1016 (2003) |
| Spindle orientation in Saccharomyces cerevisiae depends on the transport of microtubule ends along polarized actin cables. Hwang, E., Kusch, J., Barral, Y. & Huffaker, T.C, J. Cell Biol. 161, 483-488 (2003) |
| Cell migration without a lamellipodium: translation of actin dynamics into cell movement mediated by Tropomyosin S.L. Gupton, K.L. Anderson, T. P. Kole, R.S. Fischer, A. Ponti, S.E. Hitchcock-DeGregori, G. Danuser, V.M. Fowler, D.Wirtz, D. Hanein, und C.M. Waterman-Storer, JCB 168 (4) 619-631 (2005) |
| Actin dynamics in the contractile ring during cytokinesis in fission yeast. Pelham, R.J. & Chang, F., Nature, 419, 82-86. (2002) |
| CD8+ effector T cells contribute to macrophage recruitment and adipose tissue inflammation in obesity. Nishimura S, Manabe I, Nagasaki M, Eto K, Yamashita H, Ohsugi M, Otsu M, Hara K, Sugiura S,Yoshimura K, Kadowaki T, Nagai R, Nature Medicine 8, 914- 920 (15. August 2009) |
| T-cell engagement of dendritic cells rapidly rearranges MHC class II transport. M. Boes, J. Cerny, R. Masso, M. Op den Brouw, T. Kirchhausen, J. Chenk & H. L. Ploegh, Nature 418, 983 - 988 (29. August 2002) „Cover“ |
| Functional coordination of intraflagellar transport motors. G. Ou, O. E. Blacque, J. J. Snow, M. R. Leroux & J. M. Scholey, Nature 436 (7050): 583-7. (2005). |
| Three-dimensional analysis of post-Golgi carrier exocytosis in epithelial cells Kreitzer, G., Schmoranzer, J., Low, S. H., Li, X., Gan, Y., Weimbs, T., Simon, S.M. & Rodriguez-Boulan, E., Nature Cell Biol. 5, 126-136. (2003) |
| Dynamics of Membrane Clathrin-Coated Structures During Cytokinesis. James H. & Wang, Yu-Li Warner, Anne K., Keen, Traffic 7 (2), 205-215. (2006 ) |
Artikel: Neuroscience
| Activity-induced targeting of profilin and stabilization of dendritic spine morphology. Ackermann, M., und A. Matus, Nat Neurosci. Nov; 6 (11): 1194-200 (2003) |
| Dynamics and Regulation of Clathrin Coats at Specialized Endocytic Zones of Dendrites and Spines. T. A. Blanpied, D. B. Scott, M. D. Ehlers, Neuron, Vol. 36, 435-449, 24. Oktober (2002) |
| Neurabin/Protein Phosphatase-1 Complex Regulates Dendritic Spine Morphogenesis and Maturation. R. T.Terry-Lorenzo, D. W. Roadcap, T. Otsuka, T. A. Blanpied, P. L. Zamorano, C. C. Garner, S. Shenolikar, und M. D. Ehlers, MBC Vol. 16, Issue 5, 2349-2362, Mai (2005) |
| Phosphatidylinositol phosphate kinase type I regulates dynamics of large dense-core vesicle fusion. L. W. Gong, G. D. Paolo, E. Diaz, G. Cestra, M-E. Diaz, M. Lindau, P. De Camilli, und D. Toomre, PNAS, Vol. 102 No. 14 5204-5209 (2005) |
Calcium Dynamics
| Formation of planar and spiral Ca2+ waves in isolated cardiac myocytes. Ishida, H., Genka, C., Hirota, Y., Nakazawa, H. & Barry, W.H, Biophys. J. 77, 2114-2122 (1999) |
| Simultaneous imaging of phosphatidyl inositol metabolism and Ca2+ levels in PC12h cells. Morita, M., Yoshiki, F. und Kudo, Y., BBRC 308, 673-678 (2003) |
| Calcium oscillations in interstitial cells of the rabbit urethra. Johnston, L., Sergeant, G. P., Hollywood, M. A., Thornbury, K. D. & McHale, N. G, The Journal of Physiology 565 (2), 449-461 (2005). |
Microvascular Blood Flow
| Real-time observation of hemodynamic changes in glomerular aneurysms induced by anti-Thy-1 antibody. Oyanagi-Tanaka, Y., Yao, J., Wada, Y., Morioka, T., Suzuki, Y., Gejyo, F., Arakawa, M. & Oite, T., Kidney Int. 59, 252-259. (2001) |
| Real-time in vivo imaging of platelets, tissue factor and fibrin during arterial thrombus formation in the mouse. Shahrokh Falati, Prter Gross, Glenn Merrill-Skoloff, Barbara C. Furie & Bruce Furie, Nat Med 8 (10) 1175-1180 (2002) |
Sonstige Anwendungen
| Evidence of ROS generation by mitochondria in cells with impaired electron transport chain and mitochondrial DNA damage Hiroko P. Indo, Mercy Davidson, Hsiu-Chuan Yen, Shigeaki Suenaga, Kazuo Tomita, Takeshi Nishii, Masahiro Higuchi, Yasutoshi Koga, Toshihiko Ozawa, Hideyuki J. Majima, Mitochondrion No. 7 106-118 (2007) |
Publikationen
Discovering the Basic Principles of Life through the Live Imaging of C. elegans
Visualizing the cell behavioral basis of epithelial morphogenesis and epithelial cancer progression
Spinning Disk Confocal Microscopy for Quantitative Imaging and Multi-Point Fluorescence Fluctuation Spectroscopy.
Wide and Clear
Confocal Scanner Unit
Long-term observation of mitosis by live-cell microscopy is required for uncovering the role of Cohesin on compartmentalized nuclear architecture which is linked to nuclear functions.
To perform long term observation of mitosis devices are needed that have low phototoxic effects on living cells and enable high speed imaging. By using the CSU W-1 confocal scanner unit for time lapse imaging entrance into mitosis, mitotic progression and exit can be examined.
Comparison between CSU and conventional LSM in 4D movies.
To investigate interactive dynamics of the intracellular structures and organelles in the stomatal movement through live imaging technique, a CSU system was used to capture 3-dimensional images (XYZN) and time-laps images (XYT) of guard cells.
Faster, Brighter, and More Versatile Confocal Scanner Unit
List of Selected Publications : CSU-X1
List of Selected Publications : CSU-W1
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YOKOGAWA proprietary Spinning Disk technology enables fast real-time confocal imaging for applications such as high-speed 3D and long-term live cell imaging. These quantifiable imaging analysis are essential tools for modern precision drug discovery.
YOKOGAWA will contribute to technology evolution particularly in measurement and analytical tools to help build a world where researchers will increasingly focus on insightful interpretation of data, and advancing Life Science to benefit humanity.
YOKOGAWA wird zur technologischen Entwicklung beitragen, insbesondere im Bereich der Mess- und Analysewerkzeuge, um eine Welt zu schaffen, in der sich die Forscher zunehmend auf die aufschlussreiche Interpretation von Daten konzentrieren und die Biowissenschaften zum Nutzen der Menschheit voranbringen.
News
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Pressemeldung Dez 1, 2021 Yokogawa entwickelt Single Cellome System 2000 für die subzelluläre Probenahme
Yokogawa hat eine Lösung für die Einzelzellanalyse entwickelt, die hochauflösende, mit einem konfokalen Mikroskop aufgenommene Bilder nutzt, um automatisch und präzise Proben bestimmter Zellen und intrazellulärer Komponenten zu sammeln.
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